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通过流式细胞术确定临床前CAR T细胞的持续存在性

在临床前研发过程中,经常使用小鼠作为测试对象来研究CAR(嵌合抗原受体)T细胞疗法。在这种情况下,免疫功能低下的小鼠携带着人源性肿瘤负荷,并接受同种异体人类CAR T细胞给药。在工程化嵌合抗原受体的引导下,过继转移细胞与肿瘤细胞的表面抗原(例如CD19)结合。由于工程化T细胞与肿瘤细胞结合,T细胞在MHC不受限制的区域中活化并杀死肿瘤细胞。我们关注临床前研究中小鼠的多个预先定义的参数,评估肿瘤的生长和负荷以确定CAR T细胞的功效 (了解有关如何通过生物发光成像(BLI)确定功效的更多信息。 

CAR T细胞抗肿瘤反应成功的关键因素是向宿主输注后CAR T细胞存在的时间长度(持续存在性)。尽管具有完全功能,但经证明,如果CAR T细胞的持续存在性不佳则会限制有效的抗肿瘤反应。1  在临床环境中,血液恶性肿瘤患者的长期缓解与CAR T细胞的持续存留有关。2 共刺激信号被认为会影响T细胞的扩增和持续存在性。临床前研究显示,包含4-1BB共刺激域的CAR构造的功效与CAR T细胞长期持续存在、缓慢和持续的效应子功能以及比例较高的记忆T细胞有关。3 在临床前研究中评估CAR T的持续存在性对确定临床成功率具有意义。

本技术聚焦将为读者提供有关在临床前环境中使用流式细胞术测量CAR T细胞持续存在性的信息。

针对CAR T细胞候选评估的小鼠模型

2017年9月,美国食品药品监督管理局批准了首个CAR T细胞疗法。此细胞疗法由诺华公司销售,名为Kymriah。Kymriah也被称为tisagenlecleucel ,已被批准用于不再对B细胞急性淋巴细胞白血病的标准疗法产生应答的儿童和年轻人。Kymriah基于宾夕法尼亚大学的Carl June博士针对NSGTM小鼠开展的研究工作。

NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ小鼠,俗称NOD scid gamma (NSG™),不表达Prkdc基因,也不表达X连锁的Il2rg基因。scid(严重联合免疫缺陷)突变位于DNA修复复合蛋白Prkdc中,导致小鼠B细胞和T细胞缺乏。这些小鼠没有补体细胞或自然杀伤(NK)细胞,并且细胞因子信号传导通路不足。这些缺陷使这些小鼠成为理想的选择,并且高度适合植入人体免疫细胞(包括CAR T细胞)。小鼠植入了多种人类肿瘤,并且是临床前CAR T细胞研究的黄金标准。

在我们的临床前肿瘤学部门,我们可以使用任何市售的小鼠品系进行CAR T细胞疗法和其他过继性细胞移植研究,包括NSGTM小鼠,在某些条件下,我们也可以接受特种小鼠。

来自临床前肿瘤学的PersistenceTTM 试剂盒最少只需5 uL全血便可生成纵向CAR T细胞持续存在性数据。它采用具有绝对计数的裂解/免清洗的测定法形式。该试剂盒具有灵活性,可以在FITC、PE和APC通道中添加特定的抗CAR探针。杰克逊实验室(美国缅因州巴港)的NSG小鼠被给予了2x107人类PBMC,在给药后7、14和21天抽取全血,并接受PersistenceTTM试剂盒评估。

表1介绍了PersistenceTTM试剂盒中使用的试剂。图1详细介绍了门控策略。

抗体/染料

描述

mCD45

小鼠全造血细胞

hCD45

人类全造血细胞

hCD3

人类pan-T细胞标记物

hCD4

人类CD4+ T细胞标记物

hCD8

人类CD8+ T细胞标记物

计数微珠

提供绝对计数

活性染料

死细胞排除

可选:CAR特异性

FITC、PE或APC

表1:PersistenceTTM抗体试剂盒及其使用说明。

 

档案
图1:使用PersistenceTTM试剂盒分析人类T细胞。门控策略从双重排斥(A)开始,然后转向结合微珠荧光和微珠计数门(B)。排除下一个细胞碎片(C),并使用具有抗人CD45(D)的抗小鼠CD45将小鼠细胞与人类细胞区分开。通过抗人CD3门控(E)分离人T细胞,最后确定人CD8+和CD4+ T细胞的数量(F)。

使用PersistenceTTM试剂盒对CAR T细胞进行纵向免疫表型鉴定

临床肿瘤学环境中,CAR T细胞的扩增和持续存在性与患者的应答和获得​​缓解有关。4 由于这一发现,建立可靠的CAR T细胞数量跟踪方法尤为重要,不仅在评估CAR T细胞疗法的有效性方面,而且在临床前环境中的安全性评估方面也是如此。临床CAR T细胞疗法的严重副作用引起了注意,其中最严重的一种是细胞因子释放综合征(CRS),它与体内CAR T细胞的扩增相关 体内5 

PersistenceTTM 试剂盒可直接用于评估随时间推移从小鼠身上采集的样品中人类CAR T细胞的数量。由于全血需求量低,因此可以多次从同一只小鼠中采集样本,也可以使用一组小鼠来达成研究目标。NSG小鼠可能会​​接受长期研究,以进行有针对性的CAR T持续存在性评估。如何使用PersistenceTTM 试剂盒测量随时间推移NSG小鼠中人类T细胞的实例请见图2。

图2. 在21天内测量小鼠中人类T细胞的持续存在性。
图2. 在21天内测量小鼠中人类T细胞的持续存在性。

改善CAR T细胞的持续存在性

体内CAR T细胞的持续存在性是CAR T细胞疗法长期临床疗效的替代指标。研究表明,某些含有CD28共刺激域的CAR T细胞表现出与T细胞衰竭相关基因的表达增加,而具有相同抗原特异性的4-1BB(TNFSF9)共刺激域减少了耗竭表型。这可能有助于解释为什么在针对患有复发性或难治性急性淋巴细胞白血病的患者的临床试验中,表达CD28域的CAR T细胞据报告可持续存在长达3个月,而具有4-1BB域的CAR T细胞可持续存在长达5年,几乎可以评估的所有案例都超过6个月。6

多代CAR T细胞

CAR T细胞通过嵌合抗原受体的修饰而继续进化。每个CAR T细胞都有一个scFv(单链片段变量)。scFv是重链(VH)可变区和轻链(VL)可变区的组合。scFv是免疫球蛋白的VH和VL的融合蛋白,与10和25氨基酸之间的短接头肽连接。

第一代CAR具有细胞外结合域、铰链区、跨膜域和一个或多个细胞内信号传导域。所有CAR T细胞都具有用于细胞内信号传导的CD3 ζ链域,并且是T细胞激活信号的主要发送者。共刺激域(CD28或4-1BB)是第二代CAR的特征。目的是改善T细胞增殖、细胞因子分泌和体内持续存在性。

临床前数据表明,与第二代CAR相比,第三代CAR具有更好的效应子功能和更长的体内持续存在性。第三代CAR具有多个共刺激域(CD28-41BB或CD28-OX40)。装甲CAR和TRUCK(杀死普遍细胞因子的重定向CAR T细胞(CAR T cells redirected for universal cytokine killing))是有时用于第四代CAR T细胞的名称。第四代CAR T细胞可以包含增强T细胞扩增、抗肿瘤活性和持续存在性的因子。7

无论哪一代CAR或TRUCK,PersistenceTTM试剂盒均是在临床前环境中短期或长期监测体内CAR T细胞持续存在性的出色工具。

总结

使用科文斯临床前肿瘤学的PersistenceTTM试剂盒可轻松测量CAR T的持续存在性。我们的流式细胞术试剂盒可从少量血液中确定纵向CAR T的持续存在性。我们的人类CompTTM试剂盒(表2)是一个很好的例子,说明了如何将其他符合资格要求的试剂盒添加到临床前CAR T研究中,以生成全面的流式细胞术数据集。


抗体/染料

描述

hCD45

人类全造血细胞

hCD3

人类pan-T细胞标记物

hCD4

人类CD4+ T细胞标记物

hCD8

人类CD8+ T细胞标记物

hCD25

人类调节性T细胞标记物

hFoxP3

人类调节性T细胞标记物

hPD-1

人类T细胞抑制信号传导蛋白

hCD69

活化标记物

Ki-67

增殖标记物

活性染料

死细胞排除

表2. 人类CompTTM白细胞试剂盒中的单个标记物。

 

如要详细了解PersistenceTTM 试剂盒或我们其他的流式细胞术试剂盒,以将其纳入您的临床前肿瘤学研究,并了解有关我们广泛的流式细胞术项目的更多信息, 请与科文斯的科学家联系。

请注意,所有动物护理和使用均根据动物福利法规在AAALAC认可的研究中心进行,并经过IACUC协议审查和批准。


 1Song DG、Ye Q、Carpenito C、Poussin M、Wang LP、Ji C、Figini M、June CH、Coukos G、Powell DJ Jr.  通过CD137 (4-1BB)的共刺激信号传导增强CAR工程化T细胞的体内持续存在性、肿瘤定位和抗肿瘤活性。 

Cancer Res. 2011年7月 1;71(13):4617-27。

2Maude SL、Frey N、Shaw PA、Aplenc R、Barrett DM、Bunin NJ等人。嵌合抗原受体T细胞可实现白血病持续缓解。 N Engl J Med. 2014;371(16):1507-17。 

3Long AH、Haso WM、Shern JF、Wanhainen KM、Murgai M、Ingaramo M等人。4-1BB共刺激可改善嵌合抗原受体的强直信号诱导的T细胞衰竭。 Nat Med. 2015;21:581-90。

4Porter DL、Hwang WT、Frey NV、Lacey SF、Shaw PA、Loren AW等人。嵌合抗原受体T细胞在复发性难治性慢性淋巴细胞性白血病中持续存在并诱导持续缓解。 Sci Transl Med. 2015;7(303):303ra139。 

5Santomasso B、Bachier C、Westin J、Rezvani K、Shpall EJ。  CAR T细胞疗法的另一面:细胞因子释放综合征、神经毒性和经济负担。

Am Soc Clin Oncol Educ Book. 2019年1月;39:433-444。 

6Maus MV和June CH. 为过继T细胞疗法制造更好的嵌合抗原受体。Clin Cancer Res. 2016年4月 15; 22(8): 1875-1884。

7Chmielewski M、Abken H. TRUCK:第四代CAR。Expert Opin Biol Ther. 2015;15(8):1145-54。 


作者:

Mark J Cameron | 科研总监 

日期:

2020年11月

 

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